Vol. 25 Núm. 2 (2019): Verano 2019
Artículos Científicos

Bioestimulación láser para mejorar capacidad germinativa de semillas y el crecimiento de plántulas de Prosopis laevigata y Jacaranda mimosifolia

María Guadalupe Costilla-Hermosillo
Universidad de Guadalajara
Biografía
Martín Ortiz-Morales
Centro de Investigaciones en Optica, A.C.
Sofía Loza-Cornejo
Universidad de Guadalajara
Biografía
Claudio Frausto-Reyes
Centro de Investigaciones en Optica, A.C.
Sami Ali Metwally
National Research Centre
Biografía

Publicado 2019-09-25

Palabras clave

  • anatomical changes,
  • biochemical characteristics,
  • He-Ne laser,
  • germination percentage
  • cambios anatómicos,
  • características bioquímicas,
  • láser He-Ne,
  • porcentaje de germinación

Métrica

Resumen

"Jacaranda" (Jacaranda mimosifolia) y "mezquite" (Prosopis laevigata) son especies que presentan problemas en la germinación de sus semillas en condiciones naturales, por tener una cubierta muy dura e impermeable. Se han aplicado diferentes tratamientos para mejorar la respuesta germinativa de ambas especies con resultados poco favorables. Este estudio tuvo como objetivo conocer el efecto de la bioestimulación láser en semillas sobre la germinación y el crecimiento de plántulas en estas especies. Se utilizó un láser He-Ne (632 nm, 10 mW). Con tres repeticiones de 50 semillas, se aplicaron cinco tratamientos de irradiación (30 s, 60 s, 90 s, 120 s, 150 s) y el control. Los resultados para el mezquite demostraron que el control tuvo el menor porcentaje de germinación (26%), y el mayor número de semillas germinadas (96%) fue para 90 s y 150 s de irradiación.  El tratamiento de 30 s produjo un efecto positivo sobre el crecimiento de la raíz y fue significativamente diferente (p < 0.05) a los tratamientos restantes y al control. Para la jacaranda, se observaron diferencias significativas (p < 0.05) entre el control y los tratamientos, las semillas sin ningún tratamiento germinaron 29% y con los tratamientos de 90 s y 120 s la germinación fue de 97%-99%. Adicionalmente, destacó el efecto del tratamiento 120 s, ya que se registraron valores más altos para todas las variables morfológicas. Se concluye que la bioestimulación con láser puede mejorar el porcentaje de germinación y el crecimiento de las plántulas, por lo que podría contribuir significativamente a la propagación y conservación de estas especies.

Descargas

Los datos de descargas todavía no están disponibles.

Citas

  1. Aladjadjiyan, A. (2007). The use of physical methods for plant growing stimulation in Bulgaria. Journal Central European Agriculture, 8(7), 369-380.
  2. Abbas, M., Arshad, M., Nisar, N., Nisar, J., Ghaffar, A., Nazir, A., Tahir, A., & Iqbal, M. (2017). Muscilage characterization, biochemical and enzymatic activities of laser irradiated Lagenaria siceraria seedlings. Journal of Photochemistry and Photobiology, B: Biology, 173, 344-352. doi: 10.1016/j.jphotobiol.2017.06.012 DOI: https://doi.org/10.1016/j.jphotobiol.2017.06.012
  3. Abu-Elsaoud A. M. & Tuleukhanov, S. T. (2013). Can He-Ne laser induce changes in oxidative stress and antioxidant activities of wheat cultivars from Kazakhstan and Egypt? Journal of Ecology of Health & Environment, 1(1), 39-50. doi: 10.17311/sciintl.2013.39.50 DOI: https://doi.org/10.5567/sciintl.2013.39.50
  4. Azero, E. & Andrade, C. (2006). Characterization of Prosopis juliflora seed gum and the effect of its addition to k-carrageenan systems. Journal of the Brazilian Chemistry Society, 17(5), 844-850. doi: 10.1590/S0103-50532006000500005 DOI: https://doi.org/10.1590/S0103-50532006000500005
  5. Benavides, A., Garnica, M. J., Hernández, A. C., Fuentes, L. O., & Ramírez, H. (2007). Irradiación láser de semillas de lechuga para modificar la calidad nutricional de las hojas. Tecnología Química, Edición especial, 102-104.
  6. Beyene, G. & Hiwot, T. G. (2015). Feed resources of honeybees in Kewet District of Amhara, Ethiopia. Journal of Resources Development and Management, 7, 1-6.
  7. Brandt, R., Lachmuth, S., Landsschulz, C., Hab, F., & Jensen, I. (2014). Species-specific responses to environmental stress on germination and juvenile growth of two Bolivian Andean agroforestry species. New Forest, 45(6), 777-795. doi: 10.1007/s11056-014-9436-6 DOI: https://doi.org/10.1007/s11056-014-9436-6
  8. Buendía-González, L., Orozco-Villafuerte, J., Cruz-Sosa, F., Barrera-Díaz, C. E., & Vernon-Carter, E. J. (2010). Prosopis laevigata a potential chromium (VI) and cadmium (II) hyperaccumulator desert plant. Bioresource Technology, 101(15), 5862-5867. doi: 10.1016/j.biortech.2010.03.027 DOI: https://doi.org/10.1016/j.biortech.2010.03.027
  9. Chen Y.P., Yue, M., & Xun-Ling, W. (2005). Influence of He-Ne laser irradiation on seeds thermodynamic parameters and seedlings growth of Isatis indogotica. Plant Science, 168(3), 601-606. doi: 10.1016/j.plantsci.2004.09.005 DOI: https://doi.org/10.1016/j.plantsci.2004.09.005
  10. Chen Y. P., Jia, J. F., & Yue, M. (2010). Effect of CO2 laser radiation on physiological tolerance of wheat seedlings exposed to chilling stress. Photochemistry & Photobiology, 86, 600-605. doi: 10.1111/j.1751-1097.2010.00723.x DOI: https://doi.org/10.1111/j.1751-1097.2010.00723.x
  11. D’Aubeterre, R., Principal, J., & García, J. (2002). Efecto de diferentes métodos de escarificación sobre la germinación de tres especies del género Prosopis. Revista Científica, 12, 575-577.
  12. Dinoev St., Antonov, M., Stoyanov, T., & Georgieva, C. (2004). Spectral impact of low-power laser radiation on wheat and maize parameters. Problems of Engineering Cybernetics and Robotics, 54, 74-85.
  13. Dziwulska, A., Wilczek, M., & Ćwintal, M. (2006). Effect of laser stimulation on crop yield of alfalfa and hybrid alfalfa studied in years of full land use. Acta Agrophysica, 7(2), 327-336.
  14. Espinosa, H. A. & Lina, M. P. (2006). La sobre explotación del Mezquite y el deterioro de los ecosistemas. Retrieved from http://www.sicbasa.com
  15. Food and Agriculture Organization of the United Nations [FAO] (2003a). Situación actual de los recursos genéticos forestales. Retrieved from http:// www.fao.org
  16. Food and Agriculture Organization of the United Nations [FAO] (2003b). El género Prosopis “algarrobos” en América Latina y el Caribe. Distribución, bioecología, usos y manejo. Retrieved fom http://www.fao.org
  17. Foroughbakhch, R., Carrillo-Parra, A., Hernández-Piñero, J. L., M. A., Alvarado-Vázquez, M. A., Rocha-Estrada, A., & Cárdenas, M. L. (2012). Wood volume production and use of 10 woody species in semiarid zones of Northeastern Mexico. International Journal of Forestry Research, 2012, 529829. doi: 10.1155/2012/529829 DOI: https://doi.org/10.1155/2012/529829
  18. Gao, L. M., Li, Y. F., & Han, R. (2015). He-Ne laser preillumination improves the resistance of tall fescue (Festuca arundinaceae Schreb.) seedlings to high saline conditions. Protoplasma, 252, 1135-1148. doi: 10.1007/s00709-014-0748-3 DOI: https://doi.org/10.1007/s00709-014-0748-3
  19. García-Aguilera, E., Martínez-Jaime, O. A., Torres, S., & Frías-Hernández, J. T. (2000). Escarificación biológica del mezquite (Prosopis laevigata) con diferentes especies de ganado doméstico. In J. T. Frías-Hernández, V. Olalde-Portugal, & E- J. Vernon Carter (Eds.). El Mezquite Árbol de Usos Múltiples. Estado actual del conocimiento en México (117-123). Guanajuato, México: Universidad de Guanajuato, México.
  20. García-Andrade, M., González-Laredo, R. F., Rocha-Guzmán, N. E., Gallegos-Infante, J. A., Rosales-Castro, M., & Medina-Torres, L. (2013). Mezquite leaves (Prosopis laevigata), a natural resource with antioxidant capacity and cardio protection potential. Industrial Crops and Products, 44, 336-342. doi: 10.1016/j.indcrop.2012.11.030 DOI: https://doi.org/10.1016/j.indcrop.2012.11.030
  21. García-Sánchez, R., Camargo-Ricalde, S. L., García-Moya, E., Luna-Cavazos, M., Romero-Manzanares, A., & Montaño, N. M. (2012). Prosopis laevigata and Mimosa biuncifera (Leguminosae), jointly influence plant diversity and soil fertility of a Mexican semiarid ecosystem. Revista Biología Tropical, 60(1), 87-103. DOI: https://doi.org/10.15517/rbt.v60i1.2365
  22. Gladyszewska, B. (2011). Estimation of a laser biostimulation dose. International Agrophyics, 25, 403-405.
  23. Gilman, E. F. & Watson, D. G. (1993). Jacaranda mimosifolia Jacaranda. Fact Sheet ST-317, Environmental Horticulture Department, University of Florida.
  24. González, S., Fortes, D., & Herrera, R.S. (2008). Efecto de diferentes dosis de radiación láser en la germinación de semillas de kudzú (Pueraria phaseoloides). Revista Cubana de Ciencia Agrícola, 42, 93-95.
  25. Hernández-Aguilar, C., Mezzalama, M., Lozano, N., Cruz- Orea, A., Martínez, E., Ivanov, R., & Domínguez–Pacheco, A. (2008). Optical absorption coefficient of laser irradiated wheat seeds determined by photoacoustic spectroscopy. The European Physical Journal Special Topics, 153, 519-522. doi: 10.1140/epjst/e2008-00498-0 DOI: https://doi.org/10.1140/epjst/e2008-00498-0
  26. Hernández-Aguilar, C., Domínguez, P. A., Cruz, O. A., Ivanov, R., Carballo, C. A., & Zepeda, B. R. (2010). Laser in Agriculture International Agrophysics, 24, 407-422.
  27. Hong, T. S., Linington, S., & Ellis, R. (1996). Seed storage behavior: a compendium. Handbook for genebanks. No 4. Roma, Italy: IPGRI.
  28. International Seed Testing Association [ISTA] (2018). International Rules for Seed Testing, Chapter 1. ISTA Certificates, 1-20. doi: 10.15258/istarules.2018.01 DOI: https://doi.org/10.15258/istarules.2018.01
  29. Jamil, Y., Perveen, R., Ashraf, M., Ali, Q., Iqbal, M., & Ahmad, M. R. (2013). He-Ne laser induced changes in germination, thermodynamic parameters, internal energy, enzime activities and physiological attributes of wheat during germination and early growth. Laser Physics Letter, 10, 1-8. doi:10.1088/1612-2011/10/4/045606 DOI: https://doi.org/10.1088/1612-2011/10/4/045606
  30. Jia, Z. & Duan, J. (2013). Protecting effect of He-Ne laser on Winter wheat from UV-B radiation damage by analyzing proteomic changes in leaves. Advances in Bioscience and Biotechnology, 4, 823-829. doi: 10.4236/abb.2013.48109 DOI: https://doi.org/10.4236/abb.2013.48109
  31. Kareem, M. K., El Tobgy, M. K., Osman, Y. A. H., & El Sherbini, E. S. A. (2009). Effect of laser radiation on growth, yield and chemical constituents of anise and cumin plants. Journal of Applied Sciences Research, 5(5), 522-528.
  32. Lariguet, P. & Dunand, C. (2005). Plant photoreceptors: phylogenetic overview. Journal of Molecular Evolution, 61, 559-569. doi: 10.1007/s00239-004-0294-2 DOI: https://doi.org/10.1007/s00239-004-0294-2
  33. Li, F., Zhou, L., Shi, J., & Gao, S. (2012). Promotion of IAA, NAA on seed germination of Jacaranda mimosifolia. Journal of Agricultural Science & Technology, 2 (11), 1184-1189.
  34. López-Franco, Y. L., Goycoolea, F. M., Valdez, M. A., & Calderón, B. A. M. (2006). Goma de mezquite: una alternativa de uso industrial. Interciencia, 31, 183-189.
  35. López-Curto, M. L., Márquez-Guzmán, J., & Murguía-Sánchez, G. (2005). Técnicas para el estudio del desarrollo en angiospermas. México: UNAM.
  36. Maldonado-Aguirre L. & De la Garza, P. (2000). El mezquite en México: Rasgos de importancia productiva y necesidades de desarrollo. In J. T Frías-Hernández, V. Olalde-Portugal, & E. J. Vernon-Carter (Eds.), El mezquite árbol de usos múltiples. Estado actual del conocimiento en México (pp. 37-50). México: Universidad de Guanajuato.
  37. Medina-Cuéllar, S. E., Tirado-González, D. N., Portillo-Vázquez, M., López-Santiago, M. A., & Franco-Olivares, V. H. (2018). Environmental implications for the production of honey from mezquite (Prosopis laevigata) in semiarid ecosystems. Journal of Apicultural Research, 57(4), 507-515. doi: 10.1080/00218839.2018.1454377 DOI: https://doi.org/10.1080/00218839.2018.1454377
  38. Méndez, G. J., Turlan, M. O. A., Ríos, S. J. C., & Nájera, L. J. A. (2012). Ecuaciones alométricas para estimar biomasa aérea de Prosopis laevigata (Humb. And Bonpl. Ex Willd.) M. C. Johnst. Revista Mexicana de Ciencias Forestales, 3(13), 57-72. DOI: https://doi.org/10.29298/rmcf.v3i13.489
  39. Miyajima, I., Kato, A., Hagiwara, J. C., Mata, D., Facciuto, G., Soto, S., Escandón, A., Mori, M., & Kobayashi, N. (2005). Promotion of immature seed germination in Jacaranda mimosifolia. HortScience, 40(5), 1485-1486. DOI: https://doi.org/10.21273/HORTSCI.40.5.1485
  40. Mostafa, N. M., Eldahsan, O. A., & Singab, A. N. B. (2014). The genus Jacaranda (Bignoniaceae): An updated review. Pharmacognosy Communications, 4(3), 31-39. DOI: https://doi.org/10.5530/pc.2014.3.3
  41. Muszyński, S. & Gladyszewska, B. (2008). Representation of He-Ne laser irradiation effect on radish seeds with selected germination indices. International Agrophysics, 22,151-157.
  42. Orozco-Villafuerte, J., Cruz-Sosa, F., Ponce-Alquicira, E., & Vernon-Carter, E. J. (2003). Mezquite gum: fractionation and characterization of the gum exuded from Prosopis laevigata obtained from plant tissue culture and from wild trees. Carbohydrate Polymers, 54, 327–333. doi: 10.1016/S0144-8617(03)00187-5 DOI: https://doi.org/10.1016/S0144-8617(03)00187-5
  43. Palacios, R. A. (2006). Los mezquites mexicanos: biodiversidad y distribución geográfica. Boletín de la Sociedad Argentina de Botánica, 41, 99-121.
  44. Pérez-Sánchez, R. M., Jurado, E., Chapa-Vargas, L., & Flores, J. (2011). Seed germination of Southern Chihuahuan Desert plants in response to elevated temperatures. Journal of Arid Environmentsk, 75, 978-980. doi:10.1016/j.jaridenv.2011.04.020 DOI: https://doi.org/10.1016/j.jaridenv.2011.04.020
  45. Perveen, R., Jamil, Y., Ashraf, M., Ali, Q., Iqbal, M., & Ahmad, R. (2011). He-Ne laser-induced improvement in biochemical, physiological, growth and yield characteristics in sunflower (Helianthus annuus L.). Photochemistry and Photobiology 87, 1453-1463. doi: 10.1111/j.1751-1097.2011.00974.x DOI: https://doi.org/10.1111/j.1751-1097.2011.00974.x
  46. Pessarakli, M. (2014). Handbook of plant and crop physiology (3rd ed.). Boca Raton, FL: CRC Press, Taylor and Francis Group. DOI: https://doi.org/10.1201/b16675
  47. Podleśny, J., Stochmal, A., Podleśna, A., & Misiak, L. E. (2012). Effect of laser light treatment on some biochemical and physiological processes in seeds and seedlings of white lupine and faba bean. Plant Growth Regulation, 67, 227-233. doi 10.1007/s10725-012-9681-7 DOI: https://doi.org/10.1007/s10725-012-9681-7
  48. Póvoa, O. (2018). Effect of the fruits type and conservation time in the germination capacity of Jacaranda (Jacaranda mimosifolia D. Don.) seeds collected in Lentejo, South Portugal. International Journal of Plant Biology & Research, 6(2), 1084-1088.
  49. Prośba-Bialczyk, U., Szajsner, H., Grzys, E., Demczuk, A., Sacala, E., & Bąk, K. (2013). Effect of seed stimulation on germination and sugar beet yield. International Agrophysics, 27, 195-201. doi: 10.2478/v10247-012-0085-8 DOI: https://doi.org/10.2478/v10247-012-0085-8
  50. Qiu, Z. B., Zhu, X. J., Li, F. M., Liu, X., & Yue, M. (2007). The optical effect of a semiconductor laser on protecting wheat from UV-B radiation damage. Photochemical and Photobiology Sciences, 6(7), 788-793. doi: 10.1039/b618131g DOI: https://doi.org/10.1039/b618131g
  51. Qiu, Z. B., Liu, X., Tian, X. J., & Yue, M. (2008). Effects of CO2 laser pretreatment on drought stress resistence in wheat. Journal of Photochemistry and Photobiology B: Biology, 90, 17-25. doi:10.1016/j.jphotobiol.2007.09.014 DOI: https://doi.org/10.1016/j.jphotobiol.2007.09.014
  52. Qiu, Z. B., Li, J. T., Zhang, M. M., Bi, Z. Z., & Li, Z. L. (2013). He-Ne laser pretreatment protects wheat seedlings against cadmium-induced oxidative stress. Ecotoxicology and Environmental Safety, 88, 135-141. doi: 10.1016/j.ecoenv.2012.11.001 DOI: https://doi.org/10.1016/j.ecoenv.2012.11.001
  53. Rivas-Medina, G., González, C. G., Valencia, C. C. M., Sánchez, C. I., & Villanueva, D. J. (2005). Morfología y escarificación de la semilla de mezquite, huizache y ahuehuete. Técnica Pecuaria en México, 43(3), 441-448.
  54. Rodríguez-Sauceda, E. N., Rojo-Martínez, G. E., Ramírez-Valverde, B., Martínez-Ruiz, R., Cong-Hermida, M. C., Medina-Torres, S. M., & Piña-Ruiz, H. H. (2014). Análisis técnico del árbol del mezquite (Prosopis laevigata Humb. & Bonpl. Ex Willd.) en México. Ra Ximhai, 10(3), 173-193. DOI: https://doi.org/10.35197/rx.10.01.e.2014.13.er
  55. Rojas, J. J., Ochoa, J. V., Ocampo, A. S., & Muñoz, F. J. (2006). Screening for antimicrobial activity of ten medicinal plants used in Colombian folkloric medicine: an alternative in the treatment of non-nosocomial infections. BMC Complementary and Alternative Medicine, 6(2), 1-6. doi: 10.1186/1472-6882-6-2 DOI: https://doi.org/10.1186/1472-6882-6-2
  56. Rybiński, W. (2000). Influence of laser beams on the variability of traits in spring barley. International Agrophysics, 14, 227-232.
  57. Rybiński, W. & Garczyński, S. (2004). Influence of laser light on leaf area and parameters of photosynthetic activity in DH lines of spring barley (Hordeum vulgare L.) International Agrophysics, 18, 261-267.
  58. Sacala, E., Demczuk, A., Grzyś, E., Prosba-Bialczyk, U., & Szajsner, H. (2012). Impact of presowing laser irradiation of seeds on sugar beet properties. International Agrophysics, 26, 295-300. doi: 10.2478/v10247-012-0042-6 DOI: https://doi.org/10.2478/v10247-012-0042-6
  59. Sami, A. M., Sharbat, L. M., Bedour, H. A., & Aly, M. S. (2014). Effect of drought stress and Helium Neon (He-Ne) laser rays on growth, oil yield and fatty acids content in Caster bean (Ricinus communis L.). Journal of Agriculture, Forestry and Fisheries, 3(3), 203-208. doi: 10.11648/j.aff.20140303.20
  60. SAS. (2002). SAS User’s Guide: Statistics. SAS Inst. Inc., Cary, NC.
  61. Saucedo-Anaya, S. A., Zapata-Vázquez, M. C., Pinedo-Vega, J. L., Dávila-Rangel, J. I., Ríos-Martínez, C., & Mireles-Garcia, F. (2017) Study of Gamma Radiation in Honey from the Zacatecas State, Proceedings of the IJM CDMX 2017 June 18-21.
  62. Secretaría de Agricultura y Desarrollo Rural [Sagarpa] (2015). Precios al mayoreo de la miel en México. Notiabeja, 3, 4.
  63. Servicio Nacional de Sanidad, Inocuidad y Calidad Agroalimentaria [Senasica] (2015). Manual de buenas prácticas pecuarias en la producción de miel. México, D.F.: Senasica.
  64. Shichijo C, Kazuya, K., Osamu, T., & Tohru, H. (2001). Phytochrome A- mediated inhibition of seed germination in tomato. Planta, 213(5), 764-769. doi: 10.1007/s004250100545 DOI: https://doi.org/10.1007/s004250100545
  65. Socolowski, F. & Massanori, T. (2004). Germination of Jacaranda mimosifolia (D. Don Bignoniaceae) seeds: effects of light, temperature and water stress. Brazilian Archives of Biology and Technology, 47, 785-792. doi: 10.1590/S1516-89132004000500014 DOI: https://doi.org/10.1590/S1516-89132004000500014
  66. Starzycki, M., Rybiński W., Starzycka E., & Pszczoła, J. (2005). Laser light as a physical factor enhancing rapeseed resistance to blackleg disease. Acta Agrophysica, 5(2), 441-446.
  67. Sujak, A., Dziwulska-Hunek, A., & Kornazyński, K. (2009). Compositional and nutritional values of amaranth seeds after pre-sowing He-Ne laser light and alternating magnetic field treatment, International Agrophysics, 23(1), 81-86.
  68. Taie, A. A., Lobna, S. T., Metwally, S. A., & Fathy, H. M. (2014). Effect of laser radiation treatments on in vitro growth behavior, antioxidant activity and chemical constituents of Sequoia sempervirens. Research Journal of Pharmaceutical, Biological and Chemical Sciences, 5(4), 1024-1034.
  69. Torres, P. G., Huang, L. F., Chua, N. H., & Bolle, C. (2006). The GRAS protein SCL13 is a positive regulator of phytochrome-dependent red light signaling, but can also modulate phytochrome A responses. Molecular Genetics and Genomics, 273(1), 13-30. DOI: https://doi.org/10.1007/s00438-006-0123-y
  70. Torres, L. G., Carpinteyro-Urban, S. L., & Vaca, M. (2012). Use of Prosopis laevigata seed gum and Opuntia ficus-indica mucilage for the treatment of municipal wastewaters by coagulation-flocculation. Natural Resources, 3, 35-41. doi: 10.4236/nr.2012.32006 DOI: https://doi.org/10.4236/nr.2012.32006
  71. Truchliński, J., Wesolowsky, M., Koper, R., & Dziamba, S. Z. (2002). Influence of pre-sowing red light radiation on the content of antinutritional factors, mineral elements and basic nutritional components in triticale seeds. International Agrophysics, 16, 227-230.
  72. Valenzuela, N. L. M., Ríos, S. J. C, Barrientos, A. K. R., Muro, P. G., Sánchez, S. J., & Briseño, C. E. A. (2015). Estructura y composición florística en dos comunidades de mezquite (Prosopis laevigata (Humb. & Bonpl. Ex Willd.) M.C. Johnst.) en Durango, México. Interciencia, 40(7), 465-472.
  73. Weise, S. E., van Wijk, K. J., & Sharkey, T. D. (2011). The role of transitory starch in C3, CAM, and C4 metabolism and opportunities for engineering leaf starch accumulation. Journal of Experimental Botany, 62(9), 3109-3118. doi:10.1093/jxb/err035 DOI: https://doi.org/10.1093/jxb/err035
  74. Wessa, P. (2018), Free Statistics Software (version 1.2.1). Office for Research Development and Education. Retrieved from https://www.wessa.net/
  75. Wilczek, M., Koper, R., Ćwintal, M., & Kornillowicz-Kowalska, T. (2005). Germination capacity and health status of hybrid alfalfa seeds after laser treatment. International Agrophysics, 19, 257-261.
  76. Wright, S. J., Trakhtenbrot, A., Bohrer, G., Detto, M., Katul, G.G., Horvitz, N., Muller-Landau, H. C., Jones, F. A., & Nathan, R. (2008). Understanding strategies for seed dispersal by wind under contrasting atmospheric conditions. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 105(49), 19084-19089. doi: 10.1073/pnas.0802697105 DOI: https://doi.org/10.1073/pnas.0802697105
  77. Yang, L., Han, R., & Sun, Y. (2012). Damage repair effect of He-Ne laser on wheat exposed to enhanced ultraviolet-B radiation. Plant Physiology and Biochemistry, 57, 218-221. doi: 10.1016/j.plaphy.2012.06.003 DOI: https://doi.org/10.1016/j.plaphy.2012.06.003